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      蛋白質(zhì)分析技術(shù)

      蛋白質(zhì)分析技術(shù)(Western Blot、ELISA、免疫熒光與免疫組化技術(shù))

       

      1 原理:

      將通過聚丙烯酰胺凝膠電泳分離的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素或PVDF膜上,然后與能特異性識(shí)別待檢蛋白的抗體進(jìn)行反應(yīng),洗滌去除沒有結(jié)合的特異性抗體后,加入標(biāo)記的、能識(shí)別特異性抗體的種屬特異性抗體,反應(yīng)一段時(shí)間后再次洗滌去除非特異性結(jié)合的標(biāo)記抗體,加入適合標(biāo)記物的檢測試劑進(jìn)行顯色或發(fā)光等,觀察有無特異性蛋白條帶的出現(xiàn),也可通過條帶的密度大小來進(jìn)行特異性蛋白的半定量。 

      2 操作過程

      SDS-PAGE電泳→轉(zhuǎn)膜(PVDF或硝酸纖維素膜)

      封閉→一抗→洗滌→酶標(biāo)二抗反應(yīng)

      洗滌→顯色或化學(xué)發(fā)光顯影

      Western blot analysis of the cleavage of Caspase-3. IM9/Bcl-2 Cells were treated with 20mM of gossypol for 4, 8 

      and 16 h. After treatment, cells were harvested and lysed in lysis buffer. 50ug of protein was loaded in each lane and the expression of actin was detected as a loading control.

      Cytochrome c release from mitochondria to cytosol in gossypol-treated IM-9/Bcl-2 cells. Cells were treated with 10μM gossypol for different times, cytosol and mitochondrial protein were subject to SDS-PAGE followed by immunoblot with cytochrome c specific antibody.

      3 注意的問題

      (1) 蛋白質(zhì)電泳

      常用SDS-PAGE:單一亞基組成的蛋白質(zhì)

      非變性PAGE:多個(gè)不同亞基組成的蛋白質(zhì)

      Tris-Tricine膠中電泳:用于分子量小于10kDa的多肽和蛋白的電泳,能夠獲得較好的分離效果。

      (2)轉(zhuǎn)膜

      戴手套,避免用手接觸濾紙、凝膠和膜,因?yàn)槭稚系挠椭瑫?huì)阻斷轉(zhuǎn)印。濾紙和膜的尺寸與凝膠大小一致

      以適量的轉(zhuǎn)移Buffer室溫平衡濾紙、凝膠和膜15-30min,如果是PVDF膜,必須先用甲醇激活后浸泡。

      方向正確:凝膠在陰極,膜在陽極

      排去濾紙、膠和膜間的氣泡。

      電轉(zhuǎn)時(shí)間:100V 1-2h,可根據(jù)蛋白分子量的大小靈活 選擇轉(zhuǎn)移結(jié)束后,凝膠用考馬氏亮蘭染色以確定轉(zhuǎn)移效率膜用麗春紅染色觀察蛋白分子量標(biāo)準(zhǔn)的位置

      (3)封閉

      用5%脫脂奶粉或3%BSA

      (含0.1%Tween20 TBS或PBS配制)

      時(shí)間:室溫2h或4ºC隔夜

      (4)顯色或顯影

      顯色

      辣根過氧化物酶:底物為DAB

      堿性磷酸酶:底物為BCIP/NBT

      化學(xué)發(fā)光顯影

      常用。辣根過氧化物酶和堿性磷酸酶有不同的發(fā)光底物(商品化產(chǎn)品)

      注意:化學(xué)發(fā)光前將膜用不含Tween20的TBS或PBS洗滌一次曝光的時(shí)間和顯影的時(shí)間根據(jù)實(shí)際情況而定

      (5)膜的再利用

      化學(xué)發(fā)光后的硝酸纖維素膜用Stripping Buffer洗滌后(洗滌Buffer: 62.5mm pH6.7 的Tris-HCI含2%SDS和100mm的? -2ME )   用不同的一抗進(jìn)行雜交,檢測其它蛋白的表達(dá)情況。一張膜可以重復(fù)使用3-4次。堿性磷酸酶顯色的膜不能再進(jìn)行雜交

      二、ELISA

      1 原理:

      ELISA的基礎(chǔ)是抗原或抗體的固相化及抗原或抗體的酶標(biāo)記。結(jié)合在固相載體表面的抗原或抗體仍保持其免疫學(xué)活性,酶標(biāo)記的抗原或抗體既保留其免疫學(xué)活性,又保留酶的活性。在測定時(shí),受檢標(biāo)本與固相載體表面的抗原或抗體起反應(yīng)。再加入酶標(biāo)記的抗原或抗體,也通過反應(yīng)而結(jié)合在固相載體上。此時(shí)固相上的酶量與標(biāo)本中受檢物質(zhì)的量呈一定的比例。加入酶反應(yīng)的底物后,底物被酶催化成為有色產(chǎn)物,產(chǎn)物的量與標(biāo)本中受檢物質(zhì)的量直接相關(guān),故可根據(jù)呈色的深淺進(jìn)行定性或定量分析。測定方法具有很高的敏感度(pg-ng/ml水平),并且重復(fù)性好。 

      ELISA 常用的酶和底物 

      辣根過氧化物酶,底物為OPD, 深桔黃色 ,檢測波長492nm

                        TMB, 藍(lán)綠色,檢測波長450nm

        堿性磷酸酶,底物為PNPP(對-消基苯磷酸酯), 黃色 

                    檢測波長405nm

        ELISA各步驟的反應(yīng)時(shí)間

        包被:24-36h,蛋白濃度為1-5ug/ml

        封閉:37ºC 2h 或4ºC隔夜(3%BSA)

        樣本反應(yīng)時(shí)間:37ºC 45min-1h

        酶標(biāo)抗體反應(yīng)時(shí)間: 37ºC 45min-1h

        顯色時(shí)間:15min(避光)

        設(shè)對照

      可以一次包被多塊板,凍存?zhèn)溆?/p>

      2 類型

      (1)間接法測抗體

      間接法是檢測抗體常用的方法。其原理為利用酶標(biāo)記的抗抗體,檢測與固相抗原結(jié)合的受檢抗體,故稱為間接法。 

      常用于臨床血清中自身抗體的檢測,以及雜交瘤上清特異性抗體的篩選。如血清中PDCD5自身抗體的檢測。

      (2) 雙抗體夾心法測抗原

      是檢測抗原常用的方法。

      只要獲得針對受檢抗原的特異性抗體,就可用于包被固相載體和制備酶結(jié)合物。

      常用的組合:單克隆抗體+多克隆抗體

                    單克隆抗體+單克隆抗體 

      后一組合是兩種單克隆抗體針對抗原上不同的相距較遠(yuǎn)的兩個(gè)抗原決定簇,分別用于包被固相載體和制備酶結(jié)合物。

      用途:測定二價(jià)或二價(jià)以上的大分子抗原,但不適用于測定半抗原及小分子單價(jià)抗原,因其不能形成兩位點(diǎn)夾心。例如各種細(xì)胞因子的檢測。 

      雙抗體夾心法測抗原的方法:

      捕獲抗體包被→封閉(3%BSA)→待測抗原→洗滌(含0.1%Tween的PBS)→酶標(biāo)單抗或多抗→洗滌→顯色→檢測

      (3)競爭法測抗原

      1)抗體固相測抗原 小分子抗原或半抗原因缺乏可作夾心法的兩個(gè)以上的位點(diǎn),因此不能用雙抗體夾心法進(jìn)行測定,可以采用競爭法模式。

      其原理是標(biāo)本中的抗原和一定量的酶標(biāo)抗原競爭與固相抗體結(jié)合。標(biāo)本中抗原量含量愈多,結(jié)合在固相上的酶標(biāo)抗原愈少,后的顯色也愈淺。

      方法:抗體包被→封閉→同時(shí)加入待測抗原和酶標(biāo)抗原→洗滌→酶底物→顯色→ELISA reader檢測

      2)抗原固相測抗原

      其原理是標(biāo)本中的抗原和固相抗原與一定量的抗體競爭結(jié)合。標(biāo)本中抗原含量愈多,結(jié)合在固相上的抗體愈少,后的顯色也愈淺。 

      方法: 

      a: 抗原包被96孔板;   b:封閉; 

      c: 待測抗原與抗體反應(yīng)一定時(shí)間;   d: 加入96孔板 

      e: 洗滌                 f:加入酶標(biāo)二抗 

      g:洗滌               h:顯色和檢測 

      (4)IgM抗體的檢測 

      1)間接法: 

      間接法ELISA一般僅適用于檢測總抗體或IgG抗體。如用抗原包被的間接法直接測定血清中的IgM抗體,因標(biāo)本中一般同時(shí)存在較高濃度的IgG抗體,后者將競爭結(jié)合固相抗原而使一部分IgM抗體不能結(jié)合到固相上,將出現(xiàn)假陰性結(jié)果。 因此,如果用抗IgM作為二抗,間接測定IgM抗體,必須先將標(biāo)本用A蛋白或抗IgG抗體處理,以除去IgG的干擾。 

      方法:

      a: 抗原包被96孔酶標(biāo)板;   b:封閉; 

      c: 待測血清與A蛋白反應(yīng)一定時(shí)間后離心 

      d:   吸取上清液加入96孔酶標(biāo)板 

      e: 洗滌                 f:加入酶標(biāo)抗IgM的抗體 

      g:洗滌               h:顯色和檢測 

      2)捕獲包被法(夾心法) 

      先用抗人IgM抗體包被ELISA板,以捕獲血清標(biāo)本中的IgM(包括針對抗原特異性的IgM和非特異性的IgM)。然后加入相應(yīng)抗原,繼而加入針對抗原特異的酶標(biāo)抗體,再與底物作用,顏色的深淺即與標(biāo)本中的IgM含量成正相關(guān)。 

      方法: 

      a: 抗人IgM抗體包被96孔酶標(biāo)板;   b:封閉; 

      c: 加入待測血清;     d:   洗滌96孔酶標(biāo)板 

      e: 加入相應(yīng)抗原         f:加入抗原特異的酶標(biāo)抗體 

      g:洗滌               h:顯色和檢測 

      (5) ABS-ELISA技術(shù) (Avidin Biotin system-ELISA 

      原理 

      親和素是一種分子量是60,000的堿性蛋白,由四個(gè)相同亞基組成,每個(gè)亞基有一個(gè)生物素分子結(jié)合點(diǎn)。兩者均可與抗體等大分子生物活性物質(zhì)相偶聯(lián),又可被酶類等多種材料所標(biāo)記,成為一種生物反應(yīng)放大系統(tǒng)。生物素化抗體可捕獲多個(gè)親和素,后者再與酶結(jié)合,加入底物后,產(chǎn)生顏色反應(yīng)。這一系統(tǒng)可以大大提高ELISA的靈敏度。   

      操作過程: 

      抗原包被→封閉→待檢標(biāo)本→生物素化抗體→洗滌→ 酶標(biāo)記親和素→洗滌→加底物顯色和檢測 

      三 免疫熒光技術(shù) 

      利用某些熒光素,如FITC、R-PE等通過化學(xué)反應(yīng)與抗體或其它蛋白結(jié)合制備成熒光探針,然后與被測抗原或配體發(fā)生特異性結(jié)合,形成的熒光復(fù)合物在一定波長光的激發(fā)下可產(chǎn)生熒光,因此利用熒光顯微鏡或流式細(xì)胞儀可檢測未知抗原或相應(yīng)配體。

      (一)細(xì)胞膜蛋白分子的檢測

      原理:

      細(xì)胞膜表面的抗原或受體可特異地與相應(yīng)的抗體或配體結(jié)合,將針對細(xì)胞表面抗原的抗體或配體用不同的熒光素標(biāo)記,根據(jù)不同熒光物質(zhì)的大激發(fā)和發(fā)射波長的不同,即可準(zhǔn)確定量每種熒光物質(zhì)的強(qiáng)度,從而推出相應(yīng)細(xì)胞表面抗原表達(dá)量

      1 直接法:細(xì)胞+熒光素標(biāo)記的抗CD分子的抗體→4ºC反應(yīng)30-60min→熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞計(jì)分析。

      2 間接法:細(xì)胞+抗CD分子的抗體→4ºC 反應(yīng)30-60min 熒光素標(biāo)記的二抗 4ºC 反應(yīng)30-60min→熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞計(jì)分析

      懸浮細(xì)胞:用PBS洗二次后再做染色 

      貼壁細(xì)胞:先用胰酶消化成懸浮細(xì)胞再染色 

      2 Annexin V檢測技術(shù) (檢測細(xì)胞凋亡的一個(gè)常規(guī)指標(biāo))

      磷脂酰絲氨酸(Phosphatidylserine, PS)正常位于細(xì)胞膜的內(nèi)側(cè),但在細(xì)胞凋亡的早期,PS可從細(xì)胞膜的內(nèi)側(cè)翻轉(zhuǎn)到細(xì)胞膜的表面,暴露在細(xì)胞外環(huán)境中。Annexin-V是一種分子量為35~36KD的Ca2+依賴性磷脂結(jié)合蛋白,能與PS高親和力特異性結(jié)合。將Annexin-V進(jìn)行熒光素(FITC、PE)或biotin標(biāo)記,以標(biāo)記了的Annexin-V作為熒光探針,利用流式細(xì)胞儀或熒光顯微鏡可檢測細(xì)胞凋亡的發(fā)生。

      樣本處理和染色方法

      1 懸浮細(xì)胞的染色:將正常培養(yǎng)和誘導(dǎo)凋亡的懸浮細(xì)胞(0.5~1×106)用PBS洗2次,加入100ul Binding Buffer和FITC標(biāo)記的Annexin-V(20ug/ml)10ul,室溫避光30min,再加入PI(50ug/ml)5ul,避光反應(yīng)5min后,加入400ul Binding Buffer,立即用FACScan進(jìn)行流式細(xì)胞術(shù)定量檢測(一般不超過1h), 同時(shí)以不加AnnexinV-FITC及PI的一管作為陰性對照。 

      2 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞染色:先用0.25%的胰酶消化,洗滌、染色和分析同懸浮細(xì)胞。 

      3 爬片細(xì)胞染色:同上,后用熒光顯微鏡和共聚焦激光掃描顯微鏡進(jìn)行觀察。 

      (二)細(xì)胞內(nèi)蛋白分子的檢測

      細(xì)胞內(nèi)細(xì)胞因子的檢測、凋亡相關(guān)蛋白TFAR19的檢測等。

      操作過程: 

      (1)直接法: 

      細(xì)胞→3%多聚甲醛固定和 滲透化→封閉→熒光素標(biāo)記的抗體→ 洗滌→熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞計(jì)分析   

      (2)間接法: 

      細(xì)胞→3%多聚甲醛固定和滲透化→封閉→針對蛋白的特異抗體→洗滌→熒光素標(biāo)記的二抗→洗滌 → 熒光顯微鏡觀察或流式細(xì)胞計(jì)分析 

      凋亡相關(guān)蛋白TFAR19蛋白的表達(dá)和細(xì)胞定位分析 

      TFAR19(PDCD5)是由本研究室在上先報(bào)導(dǎo)的一個(gè)擁有自己知識(shí)產(chǎn)權(quán)的人類新基因,前期的功能研究表明,它是促進(jìn)細(xì)胞凋亡的增強(qiáng)劑。利用熒光素(FITC)標(biāo)記的TFAR19單克隆抗體為探針,對細(xì)胞凋亡過程中TFAR19蛋白的表達(dá)水平及定位研究發(fā)現(xiàn),凋亡早期TFAR19表達(dá)水平增高并出現(xiàn)快速核轉(zhuǎn)位現(xiàn)象。同時(shí)我們發(fā)現(xiàn),凋亡早期TFAR19蛋白的核轉(zhuǎn)位早于磷脂酰絲氨酸(PS)外翻和細(xì)胞核DNA的片段化,提示TFAR19蛋白的核轉(zhuǎn)位是細(xì)胞凋亡更早期發(fā)生的事件之一。進(jìn)一步的研究證明,凋亡早期TFAR19的核轉(zhuǎn)位具有普遍意義,不同細(xì)胞凋亡早期均出現(xiàn)TFAR19高表達(dá)和核轉(zhuǎn)位。這為研究細(xì)胞凋亡早期所發(fā)生的事件,提供了一種新的技術(shù)和指標(biāo)。

      1 懸浮細(xì)胞的染色:

      (1)收獲正常和誘導(dǎo)凋亡的細(xì)胞(0.5~1×106),PBS洗2次, 

      (2)3%多聚甲醛冰浴10min,PBS洗2次,1000rpm′10min。

      (3)加入PBS-T溶液,37°C孵育15min,PBS洗2次,

      (4)加入200ml胎牛血清,室溫反應(yīng)30min。

      (5)加入 FITC標(biāo)記的TFAR19單抗,4°C反應(yīng)30min

      (6)熒光細(xì)胞洗液洗2次,熒光顯微鏡及共聚焦激光顯微鏡下觀察TFAR19在細(xì)胞中的定位。同時(shí)用流式細(xì)胞計(jì)定量檢測TFAR19蛋白的平均熒光強(qiáng)度。

      2:貼壁細(xì)胞的原位染色

      (1) 貼壁生長的對數(shù)期細(xì)胞鋪在24孔或6孔板中(內(nèi)有潔凈蓋玻片),讓其爬片生長,待長到50%~80%滿時(shí),凋亡誘導(dǎo)劑處理細(xì)胞。

      (2) 將不同時(shí)間點(diǎn)處理的細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光染色,染色步驟同上。

      (3) 將染色的爬片細(xì)胞放于一張滴有少量甘油(5ul)的載玻片上,熒光顯微鏡或共聚焦激光掃描顯微鏡觀察TFAR19在細(xì)胞中的定位。

      四免疫組織化學(xué)技術(shù)

      原理:

      是指酶標(biāo)記的特異性抗體在組織細(xì)胞原位通過抗原抗體反應(yīng)和組織化學(xué)的成色反應(yīng),對相應(yīng)的抗原進(jìn)行定性、定位和定量測定的一項(xiàng)技術(shù)。它把免疫反應(yīng)的特異性、組織化學(xué)的可見性巧妙的結(jié)合起來,借助顯微鏡(包括熒光顯微鏡、電子顯微鏡等)的顯像和放大作用,在細(xì)胞、亞細(xì)胞水平檢測各種抗原物質(zhì)(如蛋白質(zhì)、多肽、酶、激素、病原體以及受體等),并可在原位顯示相應(yīng)的基因和基因表達(dá)產(chǎn)物。

      免疫組化染色技術(shù)的分類

      免疫熒光法(Immunofluorescence technique)

      免疫酶法(Immunoperoxidase technique)

      免疫金銀法((Immunogold technique)

      ABC法( Avidin-Biotin Complex)

      五 蛋白質(zhì)與蛋白質(zhì)相互作用的研究技術(shù)

      1 GST融合蛋白進(jìn)行Pulldow實(shí)驗(yàn) 

        (1)原理

        細(xì)菌表達(dá)的谷胱甘肽s-轉(zhuǎn)移酶(GST)融合蛋白主要用于蛋白的親和純化,也可以將GST融合蛋白作為探針,與溶液中的特異性搭檔蛋白結(jié)合,然后根據(jù)谷胱甘肽瓊脂糖球珠能夠沉淀GST融合蛋白的能力來確定相互作用的蛋白。一般在得到目標(biāo)蛋白的抗體前,或發(fā)現(xiàn)抗體干擾蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)之間的相互作用時(shí),可以啟用GST沉降技術(shù)。該方法只是用于確定體外的相互作用。

        兩種應(yīng)用:

        1)確定融合(或探針)蛋白與未知(或靶)蛋白間的新的相互作用

        2)證實(shí)探針蛋白與已知蛋白質(zhì)間可疑的相互作用   

      (2)方法:

        1) GST融合蛋白先與下列蛋白溶液之一孵育(a, 單一明確的重組蛋白;b,細(xì)胞裂解蛋白混合液;c, 體外翻譯cDNA表達(dá)得到的未知蛋白)

        2)混合液與谷胱甘肽瓊脂糖球珠反應(yīng) 4ºC 2h

        3)離心棄上清

        4)沉淀加入2× 蛋白Loading Buffer煮沸,離心

        5)取上清進(jìn)行SDS-PAGE電泳,

        6)考馬氏亮蘭染色觀察特異沉降的蛋白帶,進(jìn)一步做質(zhì)譜分析確 定沉降的蛋白;電泳后的膠也可以做Western Blot來確定沉降的蛋白中是否有目的蛋白

      該實(shí)驗(yàn)設(shè)立GST對照,反應(yīng)均在4ºC進(jìn)行

      2 免疫共沉淀

      (1)原理

      當(dāng)細(xì)胞在非變性條件下被裂解時(shí),完整細(xì)胞內(nèi)存在的許多蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)間的相互作用被保留了下來。

      如果用蛋白質(zhì)X的抗體免疫沉淀X,那么與X在體內(nèi)結(jié)合的蛋白質(zhì)Y也能沉淀下來。

      這種方法常用于測定兩種目標(biāo)蛋白質(zhì)是否在體內(nèi)結(jié)合,也可用于確定一種特定蛋白質(zhì)的新的作用搭檔

      缺點(diǎn):可能檢測不到低親和力和瞬間的蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用

      免疫共沉淀檢測蛋白質(zhì)的原理和常見問題

      (2)方法

      1) 收獲培養(yǎng)的細(xì)胞(1×107-1×108)冷PBS洗滌2次

      2)細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞,冰浴30min

      3) 12000rpm   離心 30min

      4)收集上清并加入適量抗體,4ºC搖動(dòng)1h

      5)加入ProteinG-Sepharose懸液, 4ºC搖動(dòng)1h

      6)細(xì)胞裂解液洗滌ProteinG-Sepharose混合液

      7)離心棄上清

      8)沉淀加2×蛋白Loading Buffer煮沸5-10min

      9)離心,上清液跑SDS-PAGE 膠

      10)考馬氏亮蘭染色、銀染

          Western Blot     質(zhì)譜分析

      (3)注意的問題

      1)細(xì)胞裂解

      采用溫和的裂解條件,不能破壞細(xì)胞內(nèi)存在的所有蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)

        相互作用,多采用非離子變性劑(NP40或Triton X-100)。每種細(xì)胞的裂解條件是不一樣的,通過經(jīng)驗(yàn)確定。

        不能用高濃度的變性劑(0.2%SDS),細(xì)胞裂解液中要加各種酶抑制劑,如商品化的cocktailer。

      2)使用明確的抗體,可以將幾種抗體共同使用

      3)使用對照抗體:

            單克隆抗體:正常小鼠的IgG或另一類單抗

            兔多克隆抗體:正常兔IgG

      3 酵母雙雜交系統(tǒng) 

      (1)原理:

      將編碼某一蛋白X的DNA序列與DNA結(jié)合域BD的編碼序列融合形成一個(gè)雜交體,將編碼另一蛋白Y的DNA序列與DNA激活域AD的編碼序列融合形成另一個(gè)雜交體,當(dāng)兩個(gè)雜交體共轉(zhuǎn)化酵母細(xì)胞(此酵母細(xì)胞上游有DNA結(jié)合位點(diǎn)的報(bào)告基因),若X和Y沒有相互作用,則單獨(dú)不能激活報(bào)告基因的轉(zhuǎn)錄;若X和Y可相互作用,則使BD和AD靠近形成一個(gè)有效的轉(zhuǎn)錄激活子,激活報(bào)告基因的轉(zhuǎn)錄。因此可通過檢測報(bào)告基因的轉(zhuǎn)錄來研究蛋白質(zhì)X和Y的相互作用。 

            

      1)已知蛋白之間相互作用的檢測:

      2)蛋白質(zhì)的功能域研究:通過對其中某一個(gè)蛋白質(zhì)作缺失或定點(diǎn)突變,再用此系統(tǒng)檢測是否還存在相互作用,可闡明其功能域或關(guān)鍵氨基酸;

      3)克隆新基因和新蛋白:將感興趣的蛋白質(zhì)基因與BD基因構(gòu)建成“誘餌”表達(dá)質(zhì)粒,將某一器官或組織的cDNA文庫與AD基因構(gòu)建成“獵物”基因庫,共轉(zhuǎn)化酵母細(xì)胞,可篩到與感興趣蛋白質(zhì)相互作用的蛋白質(zhì)的cDNA序列,并推測其蛋白質(zhì)序列。

      4 蛋白質(zhì)芯片

      其制作原理類似于基因芯片,所不同的是,蛋白、多肽芯片所用的樣品是提純的蛋白、多肽。其檢測的原理類似于抗原、抗體檢測的ELISA法。如采用雙抗夾心的形式,可通過機(jī)械點(diǎn)涂的方法,將多種不同的單克隆抗體點(diǎn)樣固定在固相介質(zhì)表面,如PVDF膜上,制備成抗體蛋白芯片,與制備的多種抗原樣本雜交、結(jié)合,芯片上的抗體捕獲相應(yīng)的抗原,然后再與標(biāo)記的多種不同的抗體雜交,由于抗原具有多價(jià)結(jié)合表位而結(jié)合標(biāo)記抗體,根據(jù)雜交信號(hào)的有無、多少而進(jìn)行定性、定量的分析。 


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